经典a三级在线理论香港_宅男网站免费在线看_2020最新国自产拍视频网站_av在 在线播放

首頁(yè) / 資料下載 / 知識(shí)百科

DNA免疫開發(fā)單克隆抗體~有你想不到的優(yōu)勢(shì)

發(fā)表時(shí)間:2023-01-11 訪問次數(shù):434

近年來,人類在治療埃博拉病毒感染的病人時(shí)發(fā)現(xiàn),抗埃博拉病毒的單克隆抗體在治療的過程中起著關(guān)鍵作用??茖W(xué)家認(rèn)為,快速有效地開發(fā)具有生物反應(yīng)活性的單克隆抗體的技術(shù)對(duì)于治療和控制人類面臨的各類傳染性疾病至關(guān)重要。

 

上個(gè)世紀(jì)90年代,人們就已經(jīng)開始利用DNA免疫技術(shù)開發(fā)新型疫苗。DNA疫苗的基本原理:肌肉注射人工合成包含有病毒DNA的質(zhì)粒載體,質(zhì)粒在體內(nèi)進(jìn)行基因表達(dá)并合成對(duì)應(yīng)的蛋白抗原,從而引起機(jī)體的免疫反應(yīng)。這種疫苗最顯著的特點(diǎn)是通過內(nèi)源抗原提呈途徑刺激T細(xì)胞產(chǎn)生免疫應(yīng)答。然而,在實(shí)際應(yīng)用中,基于該原理開發(fā)的DNA疫苗卻遇到了問題,例如如何選擇合適的免疫途徑和免疫佐劑。早期臨床研究數(shù)據(jù)表明,通過DNA疫苗免疫的患者血清效價(jià)較低,表明該方法沒有很好的免疫效果。 

 

近期人們對(duì)DNA疫苗的改進(jìn)主要在以下2個(gè)方面:(1)采用更加高效的免疫途徑—利用基因槍和電穿孔技術(shù)將DNA質(zhì)粒導(dǎo)入到機(jī)體細(xì)胞內(nèi),免疫效果得到顯著提升。(2)混合免疫沖擊。首先用DNA質(zhì)粒進(jìn)行免疫,然后利用重組蛋白、滅活的病毒或者減毒活疫苗沖擊,這種方法比常規(guī)的免疫沖擊采用同種抗原的效果要好很多。總體而言,在小型動(dòng)物進(jìn)行基因免疫的效果要優(yōu)于大型動(dòng)物。這一特點(diǎn)也預(yù)示著可以采用此方法開發(fā)高質(zhì)量的小鼠單克隆抗體??紤]到DNA免疫誘導(dǎo)這種應(yīng)答的獨(dú)特優(yōu)勢(shì),早期的研究主要集中在T細(xì)胞免疫應(yīng)答上。很少有人關(guān)注DNA免疫誘導(dǎo)B細(xì)胞免疫應(yīng)答的在實(shí)際應(yīng)用中的價(jià)值。事實(shí)上,誘導(dǎo)B細(xì)胞產(chǎn)生免疫應(yīng)答更加適合開發(fā)高質(zhì)量的功能性的單克隆抗體。

 

 

 

Meredith Hazen, Sunil Bhakta等用DNA免疫開發(fā)了一個(gè)抗多次跨膜蛋白(multi-drug resistant protein 4,MRP4)的單克隆抗體,MPR4是12次跨膜蛋白, 與腫瘤的多藥耐藥性的產(chǎn)生有關(guān)。腫瘤多藥耐藥性的產(chǎn)生對(duì)癌癥的治療是一個(gè)很大的挑戰(zhàn)。以下為單克隆抗體的檢測(cè)數(shù)據(jù):

 

圖1 anti MRP4抗體的檢測(cè)結(jié)果

 
影響基因免疫開發(fā)單克隆抗體的因素:

 

01插入抗原序列的設(shè)計(jì)及優(yōu)化

DNA疫苗是用哺乳動(dòng)物表達(dá)載體構(gòu)建的。表達(dá)載體的選擇與設(shè)計(jì)的免疫原插入序列對(duì)抗體的功能有非常重要的影響。經(jīng)典的抗體開發(fā)流程,往往需要表達(dá)重組蛋白。針對(duì)某些蛋白,特別是多次跨膜的GPCR蛋白和離子通道蛋白,全長(zhǎng)表達(dá)非常困難,蛋白序列和結(jié)構(gòu)的完整性對(duì)開發(fā)功能性抗體是非常關(guān)鍵的。無論是天然蛋白提取純化還是重組蛋白的表達(dá)純化,在操作處理過程中,蛋白的空間結(jié)構(gòu)極有可能會(huì)發(fā)生改變。通過基因免疫產(chǎn)生的抗體能識(shí)別蛋白構(gòu)象表位的概率要大很多。主要原因在于外源基因可以在體內(nèi)直接表達(dá)合成具有天然構(gòu)象的全長(zhǎng)蛋白,從而引起對(duì)應(yīng)的免疫應(yīng)答。

DNA疫苗對(duì)于抗原序列的選擇有獨(dú)特的優(yōu)勢(shì)。大部分情況下,會(huì)選擇表達(dá)全長(zhǎng)蛋白序列,特別是多次跨膜蛋白,都有非常好的效果。而針對(duì)胞內(nèi)表達(dá)的蛋白,設(shè)計(jì)者如果想改變蛋白表達(dá)的定位,可以人為的設(shè)計(jì)不同的信號(hào)肽,將胞內(nèi)蛋白通過不同的信號(hào)肽的作用變成分泌表達(dá)蛋白,這樣可以增強(qiáng)免疫效果。同樣,對(duì)于一次跨膜蛋白,我們可以設(shè)計(jì)只針對(duì)胞外區(qū)的抗原序列,這樣產(chǎn)生的抗體就是只識(shí)別胞外區(qū)的表位。開發(fā)針對(duì)細(xì)菌毒素的抗體,可以選擇設(shè)計(jì)細(xì)菌毒素的某個(gè)片段序列,而不是全長(zhǎng),從而避免動(dòng)物免疫過程中出現(xiàn)意外情況。

DNA疫苗的另外一個(gè)優(yōu)勢(shì)就是可以用相同的載體質(zhì)粒構(gòu)建過表達(dá)細(xì)胞株作為單克隆抗體的篩選材料,從而省略了蛋白表達(dá)純化的步驟。根據(jù)不同蛋白的宿主來源,可以選擇不同的篩選策略,詳情見表2。基于過表達(dá)細(xì)胞株的篩選方法已經(jīng)被應(yīng)用于開發(fā)抗跨膜蛋白、病毒衣殼蛋白和胞內(nèi)蛋白的單克隆抗體篩選中。在上述案例中,可以采用FACS,全細(xì)胞elisa或者IHC篩選替代傳統(tǒng)的重組蛋白間接elisa篩選。還有的研究人員采用一種新型的in-cell Western的方法篩選針對(duì)胞內(nèi)表達(dá)、膜表達(dá)或者核表達(dá)的蛋白抗體。

表1:開發(fā)單克隆抗體中使用的DNA疫苗的抗原序列來源

 表2:?jiǎn)慰寺】贵w的篩選方法

02表達(dá)載體的選擇

DNA疫苗載體的啟動(dòng)子序列是非常關(guān)鍵的調(diào)控元件。有研究通過比較CMV和human ubiquitin C promoter兩種啟動(dòng)子對(duì)于免疫效果的影響,發(fā)現(xiàn)這兩種啟動(dòng)子都能最終獲得具有生物反應(yīng)活性的高特異性的單克隆抗體,但是human ubiquitin C promoter這個(gè)啟動(dòng)子只需要一次尾靜脈注射免疫就能使小鼠在七周之內(nèi)維持非常高的血清效價(jià)。相對(duì)于常用的CMV啟動(dòng)子,還有一種高效的哺乳動(dòng)物細(xì)胞表達(dá)的啟動(dòng)子--CAG(CMV/actin/Globin),也能顯著的增強(qiáng)免疫效果。

03表達(dá)載體的選擇

免疫方法大致分為2類:第一種方法是將人工合成DNA質(zhì)粒進(jìn)行注射免疫,在注射緩沖液中通過加入脂質(zhì)體或者納米粒子可以增強(qiáng)免疫效果。第二種方法是基于物理外力作用的基因槍技術(shù)和電穿孔技術(shù)?;驑尲夹g(shù)是將DNA質(zhì)粒跟金納米粒子結(jié)合在一起后,再借助高壓氣流將納米粒子高速射入組織細(xì)胞內(nèi)部。電穿孔技術(shù)首先是將DNA疫苗注射進(jìn)入體內(nèi),然后在注射位置施加電流。總體而言,基因槍和電穿孔的免疫方法比注射免疫的方法引起動(dòng)物產(chǎn)生免疫反應(yīng)的效果要好很多,同時(shí)更加節(jié)省實(shí)驗(yàn)材料。另外還有尾靜脈注射免疫和脾臟免疫,均能誘導(dǎo)動(dòng)物產(chǎn)生對(duì)應(yīng)的抗體。免疫時(shí)間間隔一般1周免疫一次,第四次免疫之后就可以檢測(cè)血清免疫效果。具體免疫方法和蛋白結(jié)構(gòu)分類如下表:

 

 

 圖2:小鼠尾靜脈注射免疫操作流程

‍04免疫佐劑‍

在最開始研究人類DNA疫苗的時(shí)候,由于免疫效果較差,人們開始尋找合適的免疫佐劑以增強(qiáng)免疫效果。有文獻(xiàn)報(bào)道,腸桿菌伴侶蛋白Escherichia coli chaperone protein (GroEL) 被證實(shí)可以作為一種DNA免疫的分子佐劑。在開發(fā)針對(duì)GPCR的抗體過程中可以增強(qiáng)免疫應(yīng)答。FLT3(fetal liver tyrosine kinase 3 ligand)和GM-CSF(granulocyte-macrophage colony-stimulating factor)也可以作為一種免疫佐劑,在增強(qiáng)免疫效果的同時(shí),還能誘導(dǎo)產(chǎn)生識(shí)別天然蛋白的胞外區(qū)序列的抗體。

05DNA免疫-蛋白沖擊

有一種DNA免疫-蛋白沖擊的混合免疫方法,可以誘導(dǎo)產(chǎn)生高效價(jià)和高親和力抗體。這種方法前面采用常規(guī)的DNA免疫,最后一次免疫沖擊采用重組蛋白,多肽或者滅活的病毒疫苗。

傳統(tǒng)的雜交瘤細(xì)胞融合開發(fā)抗體的方法在取脾臟融合之前需要進(jìn)行免疫沖擊,以獲得有足夠多的能產(chǎn)生目的抗體的B細(xì)胞?;蛎庖叩姆绞揭餐瑯有枰M(jìn)行沖擊,一般采用靜脈注射或者腹腔注射的方法,在融合之前的3-5天進(jìn)行。有研究表明,如果采用DNA免疫的方法在細(xì)胞融合之前沒有進(jìn)行沖擊,總體的融合率,抗體的親和力都會(huì)比較低,同時(shí)大部分得到的抗體都是IgM的亞型。

 
小結(jié):

DNA免疫開發(fā)高質(zhì)量的單克隆抗體有著以下獨(dú)特的優(yōu)勢(shì):

(1)可以高效地測(cè)試不同的抗原序列的免疫效果;

(2)不需要表達(dá)或者純化抗原。特別是針對(duì)某些致病類抗原,從而避免了生物安全性的問題。

(3)針對(duì)某些突發(fā)的傳染性疾病,一旦基因序列被確認(rèn),就可以快速開發(fā)對(duì)應(yīng)的抗體。

(4)可以開發(fā)針對(duì)構(gòu)象表位的抗體;

(5)可選擇的免疫宿主廣泛,包括小鼠、兔子和人。

最后打一波廣告:

普健生物目前正在進(jìn)行基因免疫開發(fā)單克隆抗體的測(cè)試,主要是針對(duì)PDL1,PD1以及一些膜蛋白的項(xiàng)目,目前已有項(xiàng)目正在進(jìn)行亞克隆,歡迎有需要的客戶咨詢。

另外,應(yīng)廣大客戶要求,本實(shí)驗(yàn)室提供以下單克隆抗體開發(fā)相關(guān)的關(guān)鍵試劑,質(zhì)量有保障,歡迎大家選購(gòu):

  特點(diǎn)
單組分TMB 不需要A/B液,反應(yīng)快,5min之內(nèi)出結(jié)果。
雜交瘤細(xì)胞株sp2/0

融合率高, 1次融合穩(wěn)定在4000個(gè)融合克隆以上,最高融合克隆數(shù)可達(dá)10000以上,融合板及亞克隆7-10天即可進(jìn)行ELISA篩選;融合細(xì)胞不需要飼養(yǎng)細(xì)胞。

羊抗鼠二抗

質(zhì)量穩(wěn)定,效價(jià)高。

 

參考文獻(xiàn):

1 Shuying Liu,Shixia Wang,Shan Lu et al.DNA immunization as a technology platform for monoclonal antibody induction. Emerging Microbes and Infections 2016(5), e33;

2 Meredith Hazen,Sunil Bhakta et al.An improved and robust DNA immunization method to develop antibodies against extra-cellular loops of multi-transmembrane proteins. mabs 2014;6:1, 95–107.

3 Lyon GM, Mehta AK, Varkey JB et al. Clinical care of two patients with Ebola virus disease in the United States. NEnglJMed 2014; 371:2402–2409.

4 Ulmer JB, Donnelly JJ, Parker SE et al. Heterologous protection against in?uenza by injection of DNA encoding a viral protein. Science 1993; 259: 1745–1749.

5 Fynan EF, Webster RG, Fuller DH et al. DNA vaccines: protective immunizations by parenteral, mucosal, and gene-gun inoculations. Proc Natl Acad Sci USA 1993; 90:11478–11482.

6 Wang B, Ugen KE, Srikantan V et al. Gene inoculation generates immune responses against human immunode?ciency virus type 1. Proc Natl Acad Sci USA 1993; 90:4156–4160.

7 Wolff JA, Malone RW, Williams P et al. Direct gene transfer into mouse muscle in vivo.Science 1990; 247:1465–1468.

8 Jones S, Evans K, McElwaine-Johnn H et al. DNA vaccination protects against an in?uenza challenge in a double-blind randomised placebo-controlled phase 1b clinical trial. Vaccine 2009; 27: 2506–2512.

9 Kalams SA, Parker SD, Elizaga M et al. Safety and comparative immunogenicity of an HIV-1 DNA vaccine in combination with plasmid interleukin 12 and impact of intramuscular electroporation for delivery. JInfectDis 2013; 208:818–829.

10 Lu S. Heterologous prime-boost vaccination. Curr Opin Immunol 2009; 21:346–351.

11 Wang S, Kennedy JS, West K et al. Cross-subtype antibody and cellular immune responses induced by a polyvalent DNA prime-protein boost HIV-1 vaccine in healthy human volunteers. Vaccine 2008; 26:3947–3957.

12 VaineM,WangS,LiuQ et al. Pro?les of human serum antibody responses elicited by three leading HIV vaccines focusing on the induction of Env-speci?c antibodies.PLoS One 2010; 5:e13916.

13 Ledgerwood JE, Wei CJ, Hu Z et al. DNA priming and in?uenza vaccine immunogeni-city: two phase 1 open label randomised clinical trials. Lancet Infect Dis 2011; 11:916–924.

14 VaineM,WangS,HackettA et al. Antibody responses elicited through homologous or heterologous prime-boost DNA and protein vaccinations differ in functional activity and avidity. Vaccine 2010; 28:2999–3007.